Proteinkonzentrations-Rechner

Proteinkonzentrations-Rechner: Berechnen Sie Proteinkonzentrationen schnell via Lambert-Beer-Gesetz, Verdünnungsformel oder Standardkurve im Labor.

908.1K Berechnungen Aktualisiert · 2026-04-25 Lokale Ausführung · Kein Daten-Upload
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So nutzen Sie den Proteinkonzentrations-Rechner

Der Proteinkonzentrations-Rechner ist ein vielseitiges Online-Tool für biochemische und molekularbiologische Labore zur präzisen Proteinquantifizierung. Wählen Sie die passende Methode für Ihren Versuchsaufbau, tragen Sie die Messwerte ein und das Tool berechnet sofort die exakte Proteinkonzentration.

  1. Rechenmethode auswählen — Wählen Sie oben im Tool zwischen Lambert-Beer-Gesetz, Verdünnungsformel oder Standardkurve.
  2. Konzentrationseinheit festlegen — Wählen Sie zwischen mg/mL, µg/mL, g/L oder mol/L passend zu Ihrem Laborprotokoll.
  3. Messwerte eingeben — Der Proteinkonzentrations-Rechner blendet automatisch die für das gewählte Verfahren benötigten Parameter ein.
  4. Das Ergebnis wird übersichtlich zusammen mit dem vollständigen Rechenweg und der Formel angezeigt.

Formeln und Methoden zur Proteinbestimmung

Der Proteinkonzentrations-Rechner unterstützt die drei wichtigsten quantitativen Methoden der Biochemie:

1. Lambert-Beersches Gesetz (Direkte UV-Photometrie bei 280 nm)

Die direkte fotometrische Konzentrationsbestimmung nutzt die Absorption von ultraviolettem Licht durch aromatische Aminosäurereste (insbesondere Tryptophan, Tyrosin und Phenylalanin) bei einer Wellenlänge von 280 nm:

C = A / (ε × l)
SymbolBedeutung
AGemessene Extinktion / Absorption bei 280 nm (einheitenlos)
εMolarer Extinktionskoeffizient ($L \cdot mol^{-1} \cdot cm^{-1}$ oder $mL \cdot mg^{-1} \cdot cm^{-1}$)
lSchichtdicke der Messküvette in cm (Standard-Küvette: 1 cm)
CBerechnete Proteinkonzentration in der gewählten Einheit

Diese Methode im Proteinkonzentrations-Rechner eignet sich besonders für gereinigte Proteine (wie BSA oder monoklonale Antikörper) mit bekanntem Extinktionskoeffizienten.

2. Verdünnungsformel für Protein-Stammlösungen

Müssen Sie eine konzentrierte Proteinlösung für ein Experiment verdünnen oder eine Arbeitslösung herstellen, gilt die universelle Verdünnungsgleichung:

C₂ = (C₁ × V₁) / V₂
SymbolBedeutung
C₁Ausgangskonzentration der Protein-Stammlösung
V₁Eingesetztes Volumen der Stammlösung
V₂Gesamt-Endvolumen nach Verdünnung mit Puffer
C₂Resultierende Endkonzentration des Proteins

Nutzen Sie diesen Modus, um Aliquots, Verdünnungsreihen oder Enzymansätze exakt auf die gewünschte Zielkonzentration einzustellen.

3. Standardkurve (Bradford-, BCA- und Lowry-Assays)

Bei kolorimetrischen Proteinassays erzeugen Farbreaktionen (z. B. mit Coomassie-Brilliantblau bei 595 nm oder Bicinchoninsäure bei 562 nm) eine konzentrationsabhängige Farbintensität. Anhand einer Verdünnungsreihe bekannten Gehalts (z. B. BSA-Standard) wird eine lineare Regressionsgerade aufgestellt:

C = (A − b) / m
SymbolBedeutung
AGemessene Extinktion der unbekannten Probe
mSteigung der Kalibriergeraden (Slope)
bY-Achsenabschnitt der Kalibriergeraden (Intercept)
CBerechnete Proteinkonzentration

Geben Sie einfach Steigung und Achsenabschnitt aus Ihrer Regressionsanalyse in den Proteinkonzentrations-Rechner ein, um die Extinktion Ihrer Proben verlässlich umzurechnen.

Typische Anwendungsbereiche im Labor

Der Proteinkonzentrations-Rechner erleichtert alltägliche Arbeitsabläufe in Forschung, Diagnostik und Qualitätskontrolle:

  • Spektrophotometrische Quantifizierung — Schnelle A280-Auswertung gereinigter rekombinanter Proteine und Antikörper.
  • Kolorimetrische Assays — Zuverlässige Auswertung von Mikrotiterplatten-Messungen bei Bradford-, BCA- und Lowry-Assays.
  • Western-Blot-Normalisierung — Mit dem Proteinkonzentrations-Rechner berechnen Sie exakte Probenvolumina für ein einheitliches Proteinloading pro Geltasche.
  • Vorbereitung kinetischer Assays — Genaue Einstellung von Enzym- und Substratkonzentrationen vor Aktivitätsmessungen.
  • Herstellung von Arbeitslösungen — Fehlerfreie Verdünnung von Lagerbeständen in physiologische Puffer.

Mit dem Proteinkonzentrations-Rechner stellen Sie sicher, dass Ihre quantitativen Proteinanalysen reproduzierbar, präzise und fehlerfrei bleiben.

Häufige Fragen zu Proteinkonzentrations-Rechner

Welche Methoden unterstützt der Proteinkonzentrations-Rechner?

Der Proteinkonzentrations-Rechner unterstützt drei etablierte Verfahren: das Lambert-Beer-Gesetz (A280-Photometrie, C = A / (ε × l)), die Verdünnungsformel (C₁ × V₁ = C₂ × V₂) sowie die lineare Standardkurve für kolorimetrische Assays wie Bradford, BCA oder Lowry (C = (A − b) / m).

Wie funktioniert das Lambert-Beer-Gesetz im Proteinkonzentrations-Rechner?

Das Lambert-Beersche Gesetz beschreibt den Zusammenhang zwischen gemessener Extinktion (A), molarem Extinktionskoeffizienten (ε), Schichtdicke der Küvette (l) und Proteinkonzentration (C): A = ε × l × C. Umgestellt nach der Konzentration berechnet der Proteinkonzentrations-Rechner: C = A / (ε × l).

Wie wird die Proteinkonzentration mit einer Standardkurve (Bradford / BCA) berechnet?

Erstellen Sie zunächst eine Kalibrierreihe mit bekannten Protein-Standards (z. B. BSA) und ermitteln Sie die lineare Regressionsgerade y = m × x + b. Geben Sie Steigung (m), Achsenabschnitt (b) und Extinktion (A) Ihrer Probe ein. Der Proteinkonzentrations-Rechner ermittelt die Konzentration über C = (A − b) / m.

Welche Konzentrationseinheiten können berechnet werden?

Der Proteinkonzentrations-Rechner unterstützt die gängigen Laboreinheiten mg/mL, µg/mL, g/L sowie mol/L (Stoffmengenkonzentration).

Wann sollte eine A280-Messung statt eines Bradford-Assays verwendet werden?

Die direkte A280-Photometrie eignet sich für reine Proteinlösungen mit bekanntem Extinktionskoeffizienten ohne störende Nukleinsäuren oder Detergenzien. Für komplexe Proteingemische oder Zellextrakte empfiehlt sich ein Bradford- oder BCA-Assay mit Standardkurve.

Werden meine Labordaten auf dem Server gespeichert?

Nein. Alle Berechnungen im Proteinkonzentrations-Rechner erfolgen vollständig lokal in Ihrem Webbrowser. Es werden keinerlei Messdaten übertragen oder gespeichert.